急求家兔胸膜腔内压的测定生理实验的实验报告

[下面是小明同学的实验报告：实验报告实验项目项目内容 1实验目的](1)根据实验报告包括的项目分析知，实验报告中缺少实验器材和实验结论. （2）灯泡电压增大，电流增大，功率增大，不同电压下功率不同，求功率的平均值错误的，设计灯泡的“平均值”一栏是错...+阅读

急求家兔胸膜腔内压的测定生理实验的实验报告

实验十一呼吸运动的调节[目的] 学习呼吸运动的记录方法，观察各种神经和体液因素对呼吸运动的影响，从而了解其作用机理。[原理] 呼吸运动能够有节律地进行，并适应机体代谢的需要，是由于神经系统和体液因素调节的结果。体内外各种刺激可作用于中枢和外周感受器，反射性地影响呼吸运动。肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。血液中CO2分压、O2分压、H+浓度的改变刺激中枢和外周化学感受器，产生反射性调节，是保证血液中气体分压稳定的重要机制。[实验动物] 兔[器材及药品] Pclab多媒体实验系统，张力换能器（或呼吸换能器），保护电极、手术器械、兔手术台、注射器、铁支架、玻璃分针、气管插管、橡皮管（50 cm长）。2%戊巴比妥钠（或20%氨基甲酸乙酯）溶液、生理盐水、盐酸、碳酸钙、钠石灰、线。[方法与步骤]

一、实验前准备 1.取家兔一只，称重，麻醉（剂量同“实验十五”）后背位固定于手术台上。剪去颈部和剑突腹部的被毛，切开颈部皮肤，分离双侧迷走神经并穿线备用。 2.分离出气管，在2~3气管环处，作一“T”型切开，插入气管套管。 3.剑突软骨分离术：切开剑突部位的皮肤，并沿腹白线切开长约2 cm的切口，细心分离剑突表面的组织，并暴露剑突软骨与骨柄，剪断剑突骨柄。（如图32所示）注意：不能剪得过深，以免伤及其下附着的膈肌。此时剑突软骨与胸骨完全分离。提起剑突，可见剑突随膈肌的收缩而自由运动。 4.用缚有长线的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端则连至张力传感器的金属弹片上，线与腹部垂直，并使张力合适（如图33所示）。 5.张力换能器插头接在任一通道（若呼吸、血压、心电同时测，则一道为呼吸，二道为血压，三道为心电，四通为刺激标记）。选择通道采样内容为“呼吸”，设定参数：显示模式：连续记录；输入方式：DC；触发方式：刺激器触发；刺激模式为单刺激；放大倍数：500~1000倍；采样间隔为2~5 ms。调节放大倍数及X、Y轴压缩、扩展比，呼吸曲线合适后，进入“写盘”状态。

二、观察项目（每一项需打标记，请按“标记”按钮逐一添加） 1.记录正常的呼吸运动曲线，分清吸气相和呼气相。 2.窒息：堵塞气管套管20秒，观察呼吸运动的变化。 3.增大无效腔：将长约50 cm的橡皮管接到气管套管上，增大无效腔，呼吸运动有何变化？图32 游离剑突软骨的方法图33 呼吸运动调节的实验装置 4. 缺O2：将与气管套管相连的胶管与装有钠石灰的密闭广口瓶相连（瓶内存有一定量空气），呼出的CO2被吸收，在PCO2不变的情况下观察缺O2对呼吸的影响。 5. 增加吸入气中CO2浓度：将装有碳酸钙的广口瓶与气管套管相连，然后向瓶内滴人盐酸，使动物吸人过量CO2，观察呼吸运动的变化。 6. 肺牵张反射：剪断右侧迷走神经，呼吸运动有何变化？为什么？再结扎并剪断左侧迷走神经的离中端，呼吸运动有何变化？以不同刺激强度刺激该迷走神经向中端，呼吸运动有何变化？ 7. 采样“停止”，注意换名存盘，并编辑、打印输出实验结果。[注意事项] 1. 剪开气管进行插管时，应注意止血，并将气管内分泌物清理干净再插管。 2. 用保护电极刺激迷走神经向中端时，一定先检查刺激器的输出，并调整刺激强度。 3. 每项实验前均应有正常呼吸曲线为对照，各项观察时间不宜过长，出现效应后立即停止实验十二胸内压的测定[目的] 学习胸膜腔内压（简称胸内压）的直接测定方法，观察动物平静呼吸和加强呼吸时胸内压的变化，了解其胸内压的产生机理。[原理] 平静呼吸时，胸膜腔内的压力在吸气时增大，呼气时减小，但始终低于大气压，故称为胸内负压，主要由肺的回缩力所产生。胸内负压的存在是保证呼吸运动正常进行的必要条件。在紧闭口鼻呼吸时，胸内压可高于大气压。穿刺胸腔，胸膜腔密闭性破坏，则胸内负压消失，形成气胸，肺组织萎缩。[实验动物] 兔[器材及药品] Pclab多媒体实验系统、张力换能器（或呼吸换能器）、保护电极、手术器械、兔手术台、注射器、铁支架、玻璃分针、胸内套管（连一“U”形水检压计，内装有带颜色的水）、2%戊巴比妥钠（或20%氨基甲酸乙酯）溶液。[方法与步骤] 1. 利用做完实验十八的动物，于右侧腋中线与第4~5肋间隙交点处，沿肋骨上缘，剪毛切开皮肤，插入连有水检压计的胸内套管，当水检压计水柱随呼吸运动上下波动时，说明针头已进入胸膜腔，应停止进针，并固定在这一位置（如图34所示）。图34 兔胸内压测定装置注意：穿刺时，胸内套管尖端应朝向头侧，首先用较大力量穿透肌肉，然后控制进针力量，用手指抵住胸壁，防止刺入过深。

（1）观察胸内负压与呼吸运动变化的关系，记录平静呼吸时胸内负压的数值。

（2）堵塞气管套管使呼吸运动加强，记录其胸内压的数值。（3 自腹中线剖开，推开腹腔脏器，露出膈肌，观察膈肌随呼吸运动的变化。

（4）剪开右前胸皮肤，切断肋骨造成人工开放性气胸，观察胸内压的变化。

（5）打开胸腔，找到膈神经（在心基部），电刺激膈神经观察膈肌运动情况。 [注意事项] 插胸内套管时，切口不宜太大，动作要迅速，以免空气漏人胸膜腔过多。若穿刺较深而未见水柱波动，应转动一下...

牵拉颈总动脉为什么会使血压降低心率降低

颈总动脉末端和颈内动脉起始处的膨大部分。其管壁的外膜下有丰富的感觉神经末梢，末梢膨大，在电镜下呈若干层的椭圆形结构，一般称为压力感受器，与血压调节功能有关。压力感受器的适宜刺激是管壁的机械牵张。如动脉血压升高，动脉管壁被扩张至一定程度时，感觉神经末梢兴奋而发放神经冲动。在一定范围内（动脉血压60~180毫米汞柱，1毫米汞柱=0.133千帕），压力感受器的传入冲动频率与动脉管壁的扩张程度成正比，即动脉血压愈高，动脉管壁被扩张的程度也愈高，压力感受器的传入冲动频率也愈高，所以从感受器的性质，它是血管壁牵张感受器。压力感受器对搏动性的压力变化比非搏动性的压力变化更敏感，此特点与正常机体内动脉血压的搏动性特点是相适应的。

在主动脉弓、胸部升主动脉及颈总动脉等的管壁中都有压力感受器，在颈动脉窦管壁内的称为颈动脉窦压力感受器，★★★所以：因为颈动脉上分部有颈动脉窦，可以反馈调节血压，当人的血药偏高的时候，刺激颈动脉窦使其兴奋增加，信号传到大脑，反馈的调节使血压下降。这个是人体调节血压的一个机制，当你牵拉颈动脉的时候等于是刺激颈动脉窦，使其兴奋性加强，会导致家兔血压下降。

在家兔实验性dic实验中影响实验成败的最重要因素是什么实验报告

家兔急性弥漫性血管内凝血家兔弥漫性血管内凝血摘要：目的：复制急性实验性DIC动物模型，通过血浆鱼精蛋白副凝试验、纤维蛋白原定量、血小板计数所测的几项血液学实验结果，讨论急性DIC的发病机制，并初步了解检查急性DIC的几项血液学的常规方法。方法：通过给家兔耳缘静脉缓慢注射兔脑粉制作急性实验性DIC动物模型，测定家兔注入兔脑粉前5分钟、注入兔脑粉开始后10分钟及40分钟后3P实验、纤维蛋白原定量和BPC的血液学实验结果并比较。结果：DIC前后血压、呼吸频率、血小板计数、3P试验、纤维蛋白原定量。结论：DIC为促凝物质大量入血引发凝血系统被激活，凝血因子和血小板大量消耗，继发纤溶系统激活，进而发生出血综合征。关键词：弥漫性血管内凝血；家兔DIC模型；血浆鱼精蛋白副凝试验；纤维蛋白原定量；血小板计数前言：弥漫性血管内凝血是指在某些致病因子作用下凝血因子或血小板被激活，大量可溶性促凝物质入血，弥漫性微血管内血栓形成，继之因凝血因子及血小板被大量消耗及纤维蛋白溶解亢进而发生的出血综合征。

临床上，DIC患者主要表现为出血、休克、脏器功能障碍和贫血。实验室检查是DIC诊断的一项重要依据，有确诊意义的化验能直接反映凝血酶或纤溶酶活性。基于此，为了了解DIC的血液学变化和发病机制，初步了解检查急性DIC的几项血液学的常规方法，我组进行了本次实验。 1. 实验材料： 1.1 动物：健康、清洁家兔一只（母，1.95kg，南方医科大学实验动物中心提供） 1.2 器材：电热恒温水浴箱，秒表，小试管架，5ml试管*8，血细胞计数版，离心机，分光光度计，显微镜，注射器（1ml一支，5ml一支，10ml一支，50ml一支），加样枪，2ml离心管*6，家兔手术台，哺乳动物手术器械，手术线，纱布，粗剪，止血钳，组织剪，眼科剪，眼科镊，动脉夹。 1.3 药品和试剂：4%兔脑粉生理盐水浸液，1%硫酸鱼精蛋白液，血小板稀释液，20%乌拉坦，0.1%肝素生理盐水，生理盐水，饱和氯化钠溶液。

1.4 仪器设备：PcLab计算机生物信号采集处理系统，压力换能器，动静脉插管，三通管 2. 测量指标： 2.1 凝血系统指标：血小板计数、纤维蛋白原定量 2.2 纤溶系统指标：鱼精蛋白副凝试验（3P试验） 3. 实验动物的制备方法及步骤： 3.1 动物麻醉固定备皮：挑选家兔，捉拿，称量体重（Kg），按家兔体重计算麻醉量（20%乌拉坦5ml/kg），耳缘静脉缓慢注射，待家兔四肢肌肉松弛，疼痛反射、角膜反射消失，呼吸平稳后，将其固定于手术台上。用粗剪去除家兔颈部兔毛。 3.2 静脉插管：沿家兔颈正中线切开皮肤，钝性分离右侧颈静脉，穿双线，闭夹近心端，结扎远心端，剪开静脉插入预先充满生理盐水的压力换能器的导管。 3.3 动脉插管：钝性分离出左颈总动脉，穿双线，结扎远心端，夹闭近心端，剪开动脉插入预先充满生理盐水并与PcLab数据采集系统通过压力换能器相连的导管。

待各项指标稳定后，观察并记录正常血压、呼吸。 3.4 取血样本：用充有0.4ml 0.1%肝素生理盐水的5ml注射器经颈总动脉取血3ml，分两管，测定正常指标：3P试验，纤维蛋白原定量，血小板计数。 3.5 复制DIC模型：经颈静脉缓慢注射4%兔脑粉溶液（3ml/kg），注射速度为1~2ml/min。 3.6 15min后测定并记录血压、呼吸，采血测定3P试验、纤维蛋白原、血小板计数并记录。 3.7 45min后重复上述测量一次并记录。 4. 试验项目： 4.1 血小板计数（BPC）：吸血小板稀释液0.38ml于一小试管内，用血红蛋白吸管取血20 μl，立即加入血小板稀释液内，充分摇匀后，用滴管将上述混悬液一小滴滴入计数板内，静置5min后，用高倍镜计数5个中方格内血小板数，乘以1000，得每立方毫米血小板数。 4.2 血浆鱼精蛋白副实验（3P试验）：取血浆0.4ml置于小试管内，加入1%硫酸鱼精蛋白液0。

1ml，混匀，室温下静置30min，于观察终点前，将试管轻轻摇动，有白色纤维或凝块为阳性，均匀浑浊、无白色纤维为阴性。 4.3 纤维蛋白原定量（饱和盐水法）： 4.3.1取血浆3ml置于试管中，加入饱和氯化钠溶液2.7ml，充分混匀，置37℃水浴中孵育3min 4.3.2以生理盐水代替饱和氯化钠溶液，进行同样操作，作为对照管。 4.3.3以对照管调零，测出光密度（波长520mm）后，计算纤维蛋白原含量。 5. 实验结果：表1 DIC前后家兔各项指标的观察与记录血压（mmHg） 150/130 正常状态 DIC后15min 95/82 DIC后45min 65/46 呼吸频率（次/分） 57 66 80 血小板数量（109/L） 160 86 60 纤维蛋白原定量（g/L） 0.2 1.62