毕业论文是每一个大学生都需要去完成的一项任务，这也是你能够拿到学位证书的重要一点。下面小编给大家提供药学毕业论文范文一篇，欢迎阅读!
【摘要】目的 对青紫薯色素安全性进行评价。方法 采用最大给药量试验，小鼠每天3次、每次36 mL/kg灌胃给予200 g/L的青紫薯色素水溶液14 d，观察其体质量变化和死亡情况;以仓鼠肺成纤维细胞(CHL)行染色体畸变试验，对青紫薯色素进行毒理学评价。结果 小鼠灌胃给予21.6 g/(kgd) 青紫薯色素后未出现毒性反应，也无动物死亡，体质量增长良好;CHL染色体畸变试验呈阴性，染色体畸变率在正常范围内。结论 青紫薯色素灌胃给药21.6 g/(kgd)未出现急性毒性反应，青紫薯色素在1.00 g/L剂量下无致突变作用。
【关键词】 色素类 甘薯 急性毒性试验 染色体畸变
甘薯是一种耐寒、耐贫瘠、适应性广、污染少、易栽培的粮食作物[1]。国内外研究结果显示，甘薯具有抗氧化、抗突变、抗肿瘤、增强记忆等多种生理功能[2～4]。青紫心甘薯是紫甘薯的改良品种，青紫薯色素由青紫心甘薯采用酸性溶剂萃取法制备而来。青紫薯色素是一种含原花青素的物质，研究证实，它可以抑制氧化应激对组织细胞的损伤，可有效清除超氧阴离子自由基、羟基自由基、过氧化亚硝基自由基和脂类自由基，保护小鼠抗60Co ?射线辐射所致的氧化损伤，减少氧自由基的产生，抑制脂质过氧化，抑制肿瘤细胞形成等[5,6]。同时，还具有抗Fe2+引发的卵磷脂脂质体过氧化、抑制H2O2引发的红细胞溶血作用的能力[7]。本研究应用最大给药量试验及中国仓鼠肺成纤维细胞(CHL)染色体畸变试验，对青紫薯色素进行安全性评价，为拓宽甘薯应用领域及开发系列产品提供基础实验依据。
1 材料与方法
1.1 材料
青紫薯色素冻干粉，由青岛市农技站提供，批号为20031129?2，溶于水，配制成200 g/L青紫薯色素水溶液。选择昆明种小鼠60只，由河南省实验动物中心提供，雌雄各半，体质量为21～23 g。CHL细胞为置于-80 ℃或液氮冻存样品。丝裂霉素C(MMC)、环磷酰胺(CTX)，山西泰盛制药有限公司生产。肝微粒体酶(S9) 按常规方法制备。
1.2 方法
1.2.1 最大给药量试验[8] 经预试验后，选健康小鼠40只，体质量21～23 g，雌雄各半。随机分为生理盐水对照组和青紫薯色素组。禁食2 h后，青紫薯色素组小鼠灌胃给予200 g/L青紫薯色素水溶液，每次36 mL/kg，每天3次，间隔6 h，共21.6 g/(kgd);空白对照组给予等量生理盐水。两组均连续给药14 d，观察小鼠的活动状态、饮食情况、粪便、呼吸，记录体质量变化及死亡情况。
1.2.2 染色体畸变试验 以CHL细胞进行加与不加S9 的染色体畸变试验。阳性对照为不加S9的MMC (0.1 mg/L),加S9的CTX(20 mg/L)。设青紫薯色素1.00、0.50、0.25 g/L等3个剂量组，以生理盐水作为阴性对照组。每个测试组采用2个平行培养瓶。将5 104个CHL细胞接种于50 mL培养瓶中,培养72 h后,加入受试物。不加S9时, 受试物与细胞作用24 h及48 h后,分别收获细胞制片。而加S9时,受试物、S9混合液与细胞共同作用6 h后,将液体弃去,用PBS洗涤细胞3次,加入新培养液继续培养24 h后,收获细胞制片。常规制片, GIEMA染色。每一试验组每瓶选择100个分散良好的中期分裂相,在油镜下观察染色体有无断裂、缺失、易位、互换、环、多倍体等染色体畸变。
1.3 统计学处理
结果用s表示，用SPSS统计软件对数据进行处理，数据间比较采用t检验。
2 结果
2.1 最大给药量试验
小鼠灌服药物14 d内,青紫薯色素组未出现毒性反应,体质量增加，与生理盐水对照组相比，差异无显著性(P0.05)，见表1。其外观、行为活动、精神状态、饮食、大小便及呼吸等均正常，无动物死亡。
表1 青紫薯色素灌胃给药对小鼠体质量的影响(略)
2.2 染色体畸变情况
不加S9青紫薯色素各剂量组CHL 细胞染色体的畸变率为1%～3%，其畸变类型为断裂和缺失，无明显浓度依赖性;阴性对照组染色体畸变率2%，畸变类型为微小体和断裂;而阳性对照组(MMC0.1 mg/L)染色体畸变率26%，畸变类型以断裂、断片、缺失、微小体为主。
加S9青紫薯色素各剂量组CHL 细胞染色体畸变率均为2%，畸变类型有断裂、缺失、微小体;阴性对照组染色体畸变率1%，畸变类型为交换;阳性对照组(CTX 20 mg/L)的畸变率为27%，畸变类型以断裂、断片、微小体为主。
无论是加S9组还是不加S9组，24 h还是48 h收获细胞，不同剂量青紫薯色素组畸变率均5%，根据CHL细胞染色体畸变结果判定标准，畸变率在正常范围内，为阴性;阳性对照组畸变率20%，为强阳性。
3 讨论
急性毒性试验是毒理学研究的第一步，急性毒性研究方法很多，常用的有半数致死量和最大给药量试验。当受试物的毒性很低，或者因浓度或体积的限制，无法测出LD50时，可仅提供最大给药量试验的结果，以对药物安全性进行评估[8]。
本文在预试验中，因受药物浓度和小鼠胃纳量限制无法测出LD50，所以进行多次最大给药量试验。正式试验结果表明，青紫薯色素组每天3次灌胃给予小鼠青紫薯色素14 d，对动物的体质量增长、进食情况、行为活动均无明显影响，未发现因青紫薯色素蓄积而对动物产生毒性反应。小鼠灌胃给予青紫薯色素21.6 g/(kgd)，最大耐受剂量(MTD) 大于21 600 mg/kg ,按1977年颁布的化学物质急性毒性分级标准，尤其是我国对职业性化学毒物危害程度的分级标准中华人民共和国国家标准(GB5044?85)，LD5 000 mg/kg，为实际无毒物。由此确定青紫薯色素为实际无毒物。
化学物的致突变作用一般通过致突变试验来筛检[9]。CHL细胞染色体畸变试验是广泛使用的遗传毒理学试验之一。可直接从染色体水平上反映遗传物质的损伤情况，染色体是遗传单位基因的载体，具有独特的形态和结构，当受到外界诱变剂作用时出现损伤，形态及结构上就会发生畸变。染色体畸变涉及的遗传物质改变的范围比较大，一般可通过在光学显微镜下观察细胞有丝分裂中期相，计算畸变率来检测。
本文CHL染色体畸变试验应用诱导剂处理后的S9进行体外代谢活化试验，即在加S9mix和不加S9mix平行的条件下测试。观察的畸变类型有：断裂、断片、缺失、微小体、着丝点环、无着丝点环及各种辐射体等。试验结果显示，直接诱变剂MMC(0.1 mg/L)组细胞染色体畸变率为26%，间接诱变剂CTX(20 mg/L)在S9活化条件下的畸变率为27%，均为强阳性，畸变类型主要有断裂、断片、缺失、微小体等。在S9活化和非活化两种测试条件下，青紫薯色素在0.25～1.00 g/L浓度范围内，其诱发CHL细胞染色体畸变率5%，在正常范围，说明对CHL 细胞染色体无损伤作用，即在本试验条件下无致突变作用。
综上所述，青紫薯色素最大给药量为21.6 g/(kgd)，为实际无毒物。在0.25～1.00 g/L剂量范围内未见诱发CHL细胞染色体畸变率增高，无致突变作用。
【参考文献】
[1]何胜生. 甘薯的药用价值及其加工利用[J]. 江西农业学报, 2006,18(2):57?58.
[2]KANO M, TAKAYANAGI T, HARADA K, et al. Antioxidative activity of anthocyanins from purple sweet potato, Ipomoera batatas cultivar Ayamurasaki[J]. Biosci Biotechnol Biochem, 2005,69(5):979?988.
[3]YOSHIMOTO M, OKUNO S, YOSHINAGA M, et al. Antimutagenicity of sweetpotato roots[J]. Biosci Biotechnol Biochem, 1999, 63(3):537?541.
[4]CHO J, KANG J S, LONG P H, et al. Antioxidant and memory enhancing effects of purple sweet potato anthocyanin and cordyceps mushroom extract[J]. Arch Pharm Res, 2003,26(10):821?825.
[5]王关林,岳静,苏冬霞,等. 甘薯花青苷色素的抗氧化活性及抑肿瘤作用研究[J]. 营养学报, 2006,28(1):71?74.
[6]刘叶玲,朱莉,韩志武,等. 青紫薯色素保护小鼠抗 60Co 射线辐射所致氧化损伤的作用[J]. 青岛大学医学院学报, 2005,41(1):46?51.
[7]姜平平,吕晓玲,姚秀珍,等. 紫心甘薯花色苷抗氧化活性体外实验研究[J]. 中国食品添加剂, 2002(6)：8?11.
[8]陈奇. 中药药理研究方法学[M]. 第2版.北京:人民卫生出版社,2006：131?136.
[9]王心如. 毒理学基础[M]. 第4 版.北京:人民卫生出版社,2003：136
青紫薯色素安全性评价
