大鼠肝动脉插管并体外留置模型的改进论文

[经深静脉留置管直接采血检测血生化指标论文]目的探讨经深静脉留置管直接采血检测血生化指标的可行性。方法对我院SICU自2006年4～5月收治的31例留置深静脉管的危重症病患者采用经深静脉留置管直接采血检测血钾、钠、氯...+阅读

目的对体外留置肝靶向性给药途径的大鼠动脉插管模型进行改进，并探讨建立此模型的技术要点。方法在10倍手术显微镜下，采用特制内径0.5 mm导管（由硬膜外麻醉导管加工而成）经胃十二指肠动脉剪口处插入肝动脉血管内，逆行到达肝固有动脉开口处后留置导管并固定。结果 20只大鼠造模，成功者17只，成功率为85%。结论改进型大鼠肝动脉插管并体外留置模型较以往造模方法简单，并提高了模型成功率，技术易于推广，可应用于抗肝肿瘤、肝衰竭等靶向性给药的研究。

〔Ａｂｓｔｒａｃｔ〕Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ To improve the model of hepatic artery(HA) catheter and detain the catheter in vitro in rats, and approach the skill keys and value of establishing the model. Method Under the operation microscope(10), a self-made catheter with 0.5mm ID, developed by peridural anesthetic catheter, was intubated into hepatic artery, through gastroduodenal artery, then the catheter was retained and fixed in rats. Result 20 rats were used to establish the model， in which 17 rats model were successful, the ratio was 85%. Conclusion The improved model is much easily established and achievement ratio is higher than others, which may be used to study on targeting administration in curing liver tumor or hepatic failure.

〔Ｋｅｙｗｏｒｄｓ〕 Model; rats; HA catheterization; detaining in vitro; improvement

肝固有动脉插管的动物模型建立早有报道，但原有的方法易造成肝脏损伤、死亡率高，技术难以掌握。在实验研究中我们改进造模方法，掌握了技术要点，取得较为满意的效果，现将实验方法报道如下。

1 材料与方法

1．1 材料

1．1．1 动物健康SD大鼠20只，清洁级，体质量（30050）g，雌雄各半。由湖南农业大学动物实验中心提供，合格证号sck(湘）2003-0003。

1．1．2 手术器械止血钳4把，有齿镊、持针器各1把，12.5 cm显微镊1把，14 cm显微剪1把，系线镊2把，小动脉夹数枚，缝合针数枚，0号、4号缝合丝线各数支，自制内径0.5 mm动脉插管数根（由硬膜外麻醉导管加工而成）。

1．1．3 仪器 Z20P5 10倍手术显微镜：苏州六六视觉科技股份有限公司；ES-1100型电子天平：长沙湘平科技发展有限公司。

1．1．4 药品戊巴比妥钠：国药集团化学试剂有限公司，批号：F20041117，25 g/瓶，肝素钠注射液：江苏万帮生化医药股份有限公司，12 500 u/（mL支），青霉素钠注射液：山西太行药业股份有限公司，80万u/支。

1．2 方法

拟参考Lindell肝动脉插管法[1]及赖力英等人的方法[2]进行改进，具体步骤如下。

1．2．1 术前准备术前1天停止喂食，自由饮水；将硬膜外麻醉导管置于60 ℃恒温水浴箱中，预热拉长为内径约0.5 mm的导管，插口处剪成锲形，管内插入0.5 mm动脉介入导管的金属导丝；于手术前30 min经大鼠尾静脉注射50 u/mL肝素钠溶液2 mL进行手术前血液肝素钠化；以2%戊巴比妥钠45 mg/kg腹腔注射麻醉。

1．2．2 造模方法剑突以下的腹部剃毛后，络合碘消毒皮肤，手术按常规无菌手术规程操作。在腹部正中用手术刀切开皮肤切口2.5～3.0 cm，用无齿镊提起腹肌沿腹白线剪开腹肌，用止血钳钳夹切口两侧的腹肌，暴露肝脏；于胃与肝交界处用棉签钝性分离肝脏乳头叶，在其下方肝门区找到肝门静脉、肝固有动脉和胆管三者并行的Glisson系统，以最底下管径较粗的肝门静脉定位，中间外径较圆且有搏动的管道为肝固有动脉，下行分出胃十二指肠动脉及胃右动脉，右行为肝总动脉。去除血管外壁的结缔与脂肪组织，将各血管分离；胃十二指肠动脉与胃右动脉交界处用0号丝线结扎血管，近心端用丝线套起备用，小动脉夹夹闭肝总动脉，在血管己经结扎处前方剪开血管壁约1/3~1/2（见图1），剪口前短暂松小动脉1次使胃右动脉血管充盈；将特制导管经胃、十二指肠动脉剪口入动脉血管，逆行到达肝固有动脉开口处，将导管内金属导丝退出，确认管腔通畅后，近心端用已经套起的丝线结扎并固定，松开动脉夹；从腹壁引出导管并固定，连续缝合腹壁肌层。皮肤切口以75%乙醇消毒后用丝线缝合，引出的导管潜行于皮下至颈背部引出，用50 u/mL肝素钠生理盐水溶液封管，导管末端在乙醇灯下烧灼封口；术后大鼠臀部肌肉注射青霉素钠20 000 u/100 g，1次/3~5 d，防感染；隔天用生理盐水通管，并用50 u/mL肝素钠生理盐水溶液封管；每只大鼠单笼饲养。

2 结果

术中2只大鼠由于胃、十二指肠动脉剪口处血管断裂无法插管；术后20 h 1只因伤口渗血、便血而死亡；其余17只全部存活，成功率达85%，且术中出血量少，肝叶没有出现明显的损伤。术后0.5~1 h完全清醒，术后8 h可以行走，12 h饮食、活动逐渐恢复正常，伤口4 d完全愈合。术后留置管能顺利导入药物入肝，并能长期维持此功能（见图2）。

3 讨论

3．1 大鼠肝动脉插管并体外留置模型研制的目的与意义

目前在以肝脏为靶脏器的药效研究仍不理想，除了药物本身的药理作用原因外，肝靶向性差可能是重要的原因之一[3]。药物必须在其作用部位达到足够的浓度方能产生其特征性效应[4]。药物经周围静脉进入血液循环后，经过药代动力学的改变，到达肝脏的浓度已相当低，从而影响了临床疗效。而大剂量药物使用又可能造成对其他脏器的严重毒副作用，或医疗成本的提高。经由导管置入肝固有动脉的开口，药物可以不经体循环，顺血流直接作用于肝脏，肝靶向性强。这项技术能有效的提高药效、减低用药剂量、降低治疗成本以及减少药物的毒副作用。如，肝癌血供的90％以上来自肝动脉，经肝动脉给药可有效提高肿瘤局部的药物浓度，从而提高药效，减少抗肝肿瘤药物对其它脏器的毒副作用。所以肝动脉插管并体外留置大鼠模型在抗肝肿瘤、肝衰竭等研究药物对肝脏作用是有重要意义。

3．2 大鼠肝动脉插管并体外留置模型研制的现状

在药物对肝脏靶脏器作用的研究中，Lindell肝动脉插管法常用于一次性的给药实验，在打开动物腹腔导入药后又重新关闭，不能多次性的重复给药。而在科研实验中，往往需要多次乃至长期给药，这就需要肝动脉导管长期体外留置备用，而目前这方面的模型建立报道较少。参照现有的相关文献进行模型构建，发现有不少不足之处：①肝固有动脉和胃、十二指肠动脉难以定位，寻找时，极容易造成肝包膜下瘀血及肝叶损伤；②导管插入成功后，回流的血液极易在狭窄的管道内凝固而阻塞管道；③手术意外、动物死亡常见，失败率高。

3．3 大鼠肝动脉插管并体外留置模型的改进及体会

在成功建立大鼠肝动脉插管并体外留置模型之后，总结经验认为此技术改进的关键有以下几点。

①大鼠的选择鼠龄太小或体质量太轻，其胃、十二指肠动脉管径相应会过小而致导管无法插入；鼠龄太大，血管与脂肪组织粘连过多难以分离，且血管老化失去弹性极易断裂；选择鼠龄在16~30周，体质量在250~350 g的大鼠，实验效果比较理想；②手术前血液肝素钠化可以避免在导管插入成功后，回流的血液凝固阻塞管道，同时也可以起到充盈靶血管的作用，但要注意避免肝素用量过大而致伤口渗血、不愈合；③麻醉剂及量的选择在参阅文献及预实验效果比较后最终选择了戊巴比妥钠，它具有起效快、可控性强、副作用小等优点[5]；鉴于实验大鼠个体差异性，以2%戊巴比妥钠45 mg/kg标准，先推总量的2/3，以全身软瘫、角膜反射消失为进行麻醉完成的基准，若不足余下的以0.1 mL/次试推直至完成；④血管分离 Glisson系统中肝门静脉、肝固有动脉和胆管三者被共同的血管周围纤维囊所包裹，故术中血管分离操作须十分小心，尽量祛除血管外壁的结缔与脂肪组织将各血管分离，以便于血管结扎、剪切口；因为大鼠肝叶较脆，血运丰富，所以动作要轻柔，尽量避免机械损伤；动脉夹夹闭肝总动脉时间不宜过长，尽量将肝脏缺血再灌注损伤降低至最低程度；⑤导管留置导管插入后松开动脉夹，可见管内血液回流，为导管插入成功的标志；导管潜行于皮下是其长期留置体外的关键，由于大鼠活泼好动，喜欢撕咬，一般手术置管后导管容易被撕裂、咬断，故注意严防感染，加强局布消毒，并防止凝血堵管，定期使用肝素钠通管。大鼠肝动脉插管并体外留置模型的改进论文